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          蒂科生物2018春季血清* WB標準protocol

          2018-03-21 瀏覽次數:1312

          蒂科生物2018春季血清*  WB標準protocol

          蒂科生物2018春季血清*成功完成Western Blot檢測,必須滿足4個條件:

          1凝膠洗脫:轉移期間蛋白質必須從凝膠中洗脫出來,如果蛋白質還截留在凝膠中,將無法在膜上進行分析

          2吸附到膜上:在轉移過程中蛋白質必須吸附到膜上,如果蛋白不吸附,將無法在膜上進行分析

          3處理期間仍截留在膜上:在轉移后的處理過程中蛋白質必須保持吸附在印跡膜上

          4處理過程中可接近:被吸附的蛋白質必須能夠與檢測試劑接觸,如果蛋白質被掩蓋則無法檢測

          蒂科生物2018春季血清*,成功進行WB檢測,則設置合適正確的對照是*的,只要正確設置了這些對照,即可快速和準確的找到WB的問題所在,并保證實驗結果的準確性和特異性!一般需要設置的對照如下:

          l  陽性對照:明確表達檢測蛋白的組織或細胞,用于檢測抗體的工作效率

          l  陰性對照:明確不表達檢測蛋白組織或細胞,用于檢測抗體的特異性

          l  二抗對照:不加一抗,用于檢測二抗的特異性

          l  內參對照:檢測標本的質量和二抗系統

          l  空白對照:不加一抗和二抗;用于檢測膜的性質和封閉的效果

          蒂科生物2018春季血清*,WB檢測基本過程

          1、獲取細胞或組織裂解物

          1)根據檢測蛋白的位置選擇合適的裂解buffer

          蛋白位置

          推薦buffer

          全細胞

          NP-40 or RIPA

          胞漿(可溶性蛋白)

          Tris-HCl

          胞漿(骨架結合蛋白)

          Tris-Triton

          膜蛋白

          NP-40 or RIPA

          核蛋白

          RIPA or 核蛋白提取試劑盒

          線粒體蛋白

          RIPA or 線粒體分離試劑盒

          亦可購買商業化的蛋白提取試劑盒來保證標本制備的質量

          2)選擇合適的蛋白酶抑制劑,避免蛋白降解,從而保證檢測的準確性!

          2、蛋白定量

          常用的蛋白定量方法:Bradford assay,Lowry assay BCA assay。定量后,可根據情況將標本保存在-20°C /-80°C備用,進行免疫沉淀(IP)或者直接進行電泳分離蛋白

          3、電泳分離蛋白質

          蒂科生物2018春季血清*,根據待測蛋白狀態確定電泳條件:

          待測蛋白狀態

          凝膠條件

          上樣buffer

          電泳buffer

          Reduced - Denatured

          還原,變性

          β-巰基乙醇或DTT,含SDS

          SDS

          Reduced - Native

          還原,不變性

          β-巰基乙醇或DTT,不含SDS

          不含SDS

          Oxidized - Denatured

          不還原,變性

          不含β-巰基乙醇或DTT,含SDS

          SDS

          Oxidized - Native

          不還原,不變性

          不含β-巰基乙醇或DTT,不含SDS

          不含SDS

          根據待測蛋白分子量大小確定凝膠濃度

          蛋白分子量(kDa

          凝膠濃度(%)

          4-40

          20

          12-45

          15

          10-70

          12.5

          15-100

          10

          25-200

          8

          4、轉膜

          根據不同的檢測目的和待測蛋白的特性,選擇合適的膜類型。常用的轉移膜類型有:PVDF膜、硝酸纖維素膜(NC膜)和尼龍膜,其中PVDFNC膜的使用頻率zui高。各種膜的技術參數及比較如下:

           

          PVDF

          NC

          尼龍膜

          靈敏度和分辨率

          背景

          較高

          蛋白結合能力

          100-200ug/cm2(適用于SDS存在時與蛋白結合)

          80-100ug/cm2

          >400ug/cm2

          機械強度

          干的膜易脆

          軟而結實

          溶劑抗性

          使用前是否需要浸潤

          100%甲醛潤濕

          緩沖液潤濕

          緩沖液潤濕

          適用染色方法

          膠體金、麗春紅、酰胺黑、印度墨汁、考馬斯亮蘭

          膠體金、麗春紅、酰胺黑、印度墨汁

          不能用陰離子染料

          適用檢測方法

          顯色法、化學發光、熒光、放射性、化學熒光、快速免疫檢測

          顯色法、化學發光、熒光、放射性

          顯色、化學發光、放射性

          適用范圍

          普通蛋白WB、糖蛋白檢測、蛋白質測序、氨基酸分析、重復檢測

          普通蛋白WB、氨基酸分析、重復檢測。0.1um膜適用于7kDa以下蛋白

          低濃度小分子蛋白、酸性蛋白、糖蛋白、蛋白多糖、核酸檢測常用

          價格

          較低

          5、封閉

          去掉膜上多余的非特異性結合位點,降低背景。常用的封閉溶液有:含BSA或者脫脂奶粉的TBSTTBS

          6、一抗孵育

          一抗的選擇成功與否,是整個WB實驗成功的關鍵:選擇一抗有以下幾個注意點:

          l  選擇適合檢測標本種屬的一抗(說明書有驗證)

          l  選擇適用于WB實驗方法的一抗(說明書有驗證)

          l  選擇單克隆抗體或者經過親和純化的多克隆抗體

          一抗的保存和使用:

          l  根據說明書的要求條件進行抗體的保存;一般需要將抗體分裝后放入-20度保存,避免反復凍融。

          l  抗體的工作液現配現用,在4度保存不要超過2

          l  根據說明書推薦濃度使用TBST稀釋一抗。由于實驗室條件和檢測方法等的差異,說明書推薦的稀釋比例只作參考,需要在說明書推薦的濃度周邊進行多個濃度梯度的實驗檢測,然后選擇信噪比的抗體濃度進行實驗。如果說明書沒有推薦濃度,可進行多個稀釋比例進行摸索*稀釋度(1:100-1:3000)。

          l  孵育條件:推薦4°C孵育過夜(一般大于18個小時),根據抗體親和力不同孵育時間有所區別

          7、二抗孵育

          根據說明書推薦濃度使用TBST稀釋一抗。如果說明書沒有推薦濃度,可進行多個稀釋比例進行摸索*稀釋度(1:1000-1:20000)。孵育條件一般為室溫1-2小時

          8、底物孵育

          選擇顯色或者化學發光底物。一般傾向于化學發光,靈敏度高且背景低,節省抗體用量

          9、結果分析和檢測

          凝膠成像系統檢測或者暗室曝光到膠片

          Note:從封閉開始,每步之間都需要用TBST進行洗滌,3次,每次5min

          蒂科生物2018春季血清*,WB技術要點和常見問題分析

          WB過程中常見的問題及可能原因分析

          問題

          可能原因

          驗證或解決辦法

          轉膜不充分

          膜沒有*均勻濕透

          使用100% methanol浸透膜

          靶蛋白分子量小于10,000

          選擇小孔徑的膜,縮短轉移時間

          靶蛋白等電點等于或接近轉移緩沖液pH

          可嘗試使用其他緩沖液如CAPS緩沖液(pH 10.5)或使用低pH值緩沖液如乙酸緩沖液

          甲醇濃度過高

          過高甲醇濃度會導致蛋白質與SDS分離,從而沉淀在凝膠中,同時會使凝膠收縮或變硬,從而抑制高分子量蛋白的轉移。降低甲醇濃度或者使用乙醇或異丙醇代替

          轉移時間不夠Thick gel

          對于厚的膠以及高分子量蛋白需要延長轉移時間

          背景高

          膜沒有*均勻濕透

          使用100% methanol浸透膜

          洗膜不充分

          增加洗液體積和洗滌次數

          阻斷不充分

          增加封閉液孵育時間,或者提高溫度。選擇合適的封閉試劑(脫脂奶粉,BSA,酪蛋白等)

          二抗濃度過高

          降低二抗濃度

          檢測過程中膜干燥

          保證充分的反應液,避免出現干膜現象

          曝光過度

          縮短曝光時間

          抗體與阻斷蛋白有交叉反應

          檢測抗體與阻斷蛋白的交叉反應性,選擇無交叉反應的封閉劑。洗滌液中加入Tween-20可減少交叉反應

          沒有陽性條帶

          抗體染色不充分

          增加抗體濃度,延長孵育時間

          酶失活

          直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯物

          標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低

          設置陽性對照,如果陽性對照有結果,但標本沒有則可能是標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低??煽紤]增加標本上樣量解決靶蛋白含量低的原因。

          試劑不匹配

          一抗與組織種屬,一抗與二抗或/和底物與酶系統之間不匹配。通過設置內參照可以驗證二級檢測系統的有效性

          一抗失效

          選擇在有效期內抗體;并選擇現配現用的工作液

          HRP抑制劑

          所用溶液和容器中避免含有疊N化Na

          有陽性條帶,但條帶比較弱

          抗體染色不充分

          增加抗體濃度,延長孵育時間

          酶活性降低

          直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯物

          標本中靶蛋白含量太低

          增加標本上樣量。

          洗膜過度

          縮短洗滌時間

          HRP抑制劑

          所用溶液和容器中避免含有疊N化Na

          抗體活性降低

          選擇在有效期內的抗體,工作液現配現用,避免長時間放置

          蛋白轉移不充分

          見上述

          封閉過度

          減少封閉劑的量或縮短時間;換用不同封閉劑類型

          曝光時間過短

          延長曝光時間

          HRP抑制劑

          所用溶液和容器中避免含有疊N化Na

          條帶位置(大?。┎粚?;或有非特異性條帶

          二抗的非特異性結合

          增加一個對照:不加一抗,其他操作過程不變,即可驗證背景是否由二抗系統來源。選擇其他二抗(特異性更強的,只針對重鏈的)

          一抗的特異性不夠

          使用單克隆或者親和純化的抗體,保證抗體的特異性

          蛋白降解

          使用新鮮制備的標本,并使用蛋白酶抑制劑

          二聚體或多聚體存在

          增加蛋白質變性過程及強度

          抗體濃度過高

          降低抗體(一抗、二抗)濃度,可以減少非特異性條帶

          蛋白上樣量過大

          降低上樣量

          背景有斑點

          封閉劑中有聚集體

          使用前過濾封閉試劑

          HRP耦聯二抗中有聚集體

          過濾二抗試劑,去除聚集體

          膜上出現反像(暗背景上白色帶)

          HRP含量過高

          降低酶聯二抗的濃度

           

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